PRP и задний боковой спондилодез поясничного отдела.

PRP и задний боковой спондилодез поясничного отдела.

Curr Rev Musculoskelet Med DOI

10.1007/s12178-008-9032-5


PRP и задний боковой спондилодез поясничного отдела.

  • Стивен Сэмпсон

  • Майкл Герхардта

  • Берт Мандельбаум

Журнал Humana Press 2008

Как правило, поддержание артродеза в заднем спондилодезе поясничного отдела позвоночника может быть довольно сложным процессом и требует постоянного наблюдения [36]. Существует множество литературы и споров вокруг эффективности тромбоцитарного геля в лечении позвоночника и приживлении трансплантатов [37-39].
Исследования доктора Карреона задействовали 76 пациентов с задним боковым спондилодезом поясничного отдела. Для процедуры использовали 500 мл крови, было получено около 30 мл PRP. При помощи рентгенограмм и КТ были выявлены проблемы с межпозвоночными дисками у всех пациентов. Исследование показало, что в группе, применяющей PRP, в течение 2 лет улучшение наступило у 25% пациентов [37].
Доктор Лоуэри ретроспективно изучал 19 случаев спондилодеза у больных, применяющих PRP на протяжении 13 месяцев. По результатам лечения не было обнаружено псевдоартроза у 100% пациентов [41]
Доктором Хи обследовано 23 больных, перенесших дискэктомию, наложение систем фиксации с использованием PRP по сравнению с контрольной группой в течение 2-летнего наблюдения. Интересно, что было обнаружено ускоренное костное заживление при использовании PRP терапии [36]. Концентрация тромбоцитов для терапии была замерена и составляла 489% от исходного уровня [36].
Исследование доктора Чена доказало, что PRP может потенциально играть роль в предотвращении дегенерации диска. Он продемонстрировали, что PRP может выступать в качестве фактора роста для индуцирования пролиферации и дифференцировки и формирования регенерации [42]. Это предполагает альтернативный вариант консервативного лечения больных с остеохондрозом, вместо традиционных вариантов, в том числе инъекций кортостероидов и, в конечном счете, операции.

Список литературы и ссылки:

  1. Mishra A, Pavelko T. Treatment of chronic elbow tendinosis with buffered platelet-rich plasma. Am J Sports Med. 2006;10(10):1–5.

  2. Barrett S, Erredge S. Growth factors for chronic plantar fascitis. Podiatry Today. 2004;17:37–42.

  3. Woolf AD, Pfleyer B. Burdon of major musculoskeletal condi­tions. Bull World Health Organ. 2003;81:646–56.

  4. Anitua M, Sa´nchez E, Nurden A, Nurden P, Orive G, And´ıa I. New insights into and novel applications for platelet-rich fibrin therapies. Trends Biotechnol. 2006;24(5):227–34.

  5. Praemer AF. Musculoskeletal conditions in the United States. 2nd ed.Rosemont:AmericanAcademyofOrthopaedicSurgeons;1999.

  6. Marx R, Garg A. Dental and craniofacial applications of platelet-rich plasma. Carol Stream: Quintessence Publishing Co, Inc.; 2005.

  7. Everts P, Knape J, Weirich G, Schonberger J, Hoffman J, Overdevest E, et al. Platelet-rich plasma and platelet gel: a review. JECT. 2006;38:174–87.

  8. Pietrzak W, Eppley B. Scientific foundations platelet rich plasma: biology and new technology. J Craniofac Surg. 2005;16(6):1043– 54.

  9. Marx RE. Platelet-rich plasma (PRP): what is PRP and what is not PRP? Implant Dent. 2001;10:225–8.

  1. Ferrari M, Zia S, Valbonesi M. A new technique for hemodilu-tion, preparation of autologous platelet-rich plasma and intraoperative blood salvage in cardiac surgery. Int J Artif Organs. 1987;10:47–50.

  2. Antitua E, Andia I, Sanchez M, Azofra J, Del Mar Zalduendo M, De La Fuente M, et al. Autologous preparations rich in growth factors promote proliferation and induce VEGF and HGF pro­ductions by human tendon cells in culture. J Orthop Res. 2005;23:281–6.

  3. Fenwick SA, Hazlelman BL, Riley GP. The vasulature and its role in the damaged and healing tendon. Arthritis Res. 2002;4: 252–60.

  4. Hayem G. Tenology: a new frontier. Joint, Bone, Spine. Rev Rhum. 2001;68:19–25.

  5. Jobe F, Ciccotti M. Lateral and medial epicondylitis of the elbow. J Am Acad Orthop Surg. 1994;2:1–8.

  6. Edwards SG, Calandruccio JH. Autologous blood injections for refractory lateral epicondylitis. Am J Hand Surg. 2003;28(2): 272–8.

  7. Antiua E, Sanchez M, Nurden A, Zalduendo M, De La Fuente M, Prive G, et al. Autologous fibrin matrices: a potential source of biological mediators that modulate tendon cell activities. J Bio-med Mater Res Pt A. 2006;77(2):285–93.

  8. Kader D, Sakena A, Movin T, Magulli N. Achilles tendinopathy: some aspects of basic science and clinical management. Br J Sports Med. 2002;36:239–49.

  9. Smidt N, Assendelft W, Arola H, et al. Effectiveness of physio­therapy for lateral epicondylitis: a systemic review. Ann Med. 2003;35:51–62.

  10. Werner S, Grose R. Regulation of wound healing by growth factors and cytokines. Physiol Rev. 2003;83:835–70.

  11. Kirker-Head CA. Potential applications and delivery strategies for bone morphogenetic proteins. Adv Drug Deliv Rev. 2000;43:65–92.

  12. Froum SJ, Wallace S, Tarnow DP, Cho SC. Effect of platelet-rich plasma on bone growth and osseointegration in human maxillary sinus grafts: three bilateral case reports. Int J Periodontics Restorative Dent. 2002;22:45–53.

  13. Raghoebar GM, Schortinghuis J, Liem R, Ruben J, Van der Wal J, Vissink A. Does platelet-rich plasma promote remodeling of autologous bone grafts used for the augmentation of the maxillary sinus floor? Clin Oral Implants Res. 2005;16:349–56.

  14. Molloy T, Wang Y, Murrell G. The roles of growth factors in tendon and ligament healing. Sports Med. 2003;33(5):381–94.

  15. Ranly D, Lohmann C, Andreacchio D, Boyan B, Schwartz Z. Platelet-rich plasma inhibits demineralized bone matrix-induced bone formation in nude mice. J Bone Joint Surg. 2007;89: 139–46.

  16. Eppley B, Woodell J, Higgins J. Platelet Quantification and growth factor analysis from platelet-rich plasma: Implications for wound healing. Plast Reconstr Surg. 2004;114(6):1502–7.

  17. Zehnder JL, Leung LLK. Development of antibodies to thrombin and factor V with recurrent bleeding in a patient exposed to topical bovine thrombim. Blood. 1990;76:2011–6.

  18. Kajikawa Y, Morihara T, Sakamoto H, Matsuda K, Oshima Y, Yoshida A, et al. Platelet-rich plasma enhances the initial mobilization of circulation-derived cells for tendon healing. J Cell Physiol. 2008;215(3):837–45.

  19. Taylor M, Norman T, Clovis N, Blaha D. The response of rabbit patellar tendons after autologous blood injection. Med Sci Sports Exerc. 2002;34(1):70–3.

  20. Berghoff W, Pietrzak W, Rhodes R. Platelet-rich plasma appli­cation during closure following total knee arthroplasty. Orthopedics. 2006;29(7):590–8.

  21. Gardner MJ, Demetrakopoulos D, Klepchick P, Mooar P. The efficacy of autologous platelet gel in pain control and blood loss in total knee arthroplasty: an analysis of the haemoglobin, narcotic requirement and range of motion. Int Orthop. 2006;31:309–13.

  22. Everts P, Devilee R, Mahoney C, Eeftinck-Schattenenkerk M, Knape J, Van Zundert A. Platelet gel and fibrin sealant reduce allogeneic blood transfusions in total knee arthroplasty. Acta Anaesthesiol Scand. 2006;50:593–9.

  23. Crovetti G, Martinelli G, Issi M, Barone M, Guizzardi M, Campanati B, et al. Platelet gel for healing cutaneous chronic wounds. Transfus Apher Sci. 2004;30:145–51.

  24. McAleer JP, Kaplan E, Persich G. Efficacy of concentrated autologous platelet-derived growth factors in chronic lower-extremity wounds. J Am Podiatr Med Assoc. 2006;96(6):482–8.

  25. Ghandi A, Dumas C, O’Connor J, Parsons J, Lin S. The effects of local platelet rich plasma delivery on diabetic bone fracture healing. Bone. 2006;38:540–6.

  26. Beam HA, Parsons JR, Lin SS. The effects of blood glucose control upon fracture healing in the BB Wistar rat with diabetes mellitus. J Orthop Res. 2002;20:1210–6.

  27. Hee HT, Majd ME, Holt RT, Myers L. Do autologous growth factors enhance transforaminal lumbar interbody fusion? Eur Spine J. 2003;12(12):400–7.

  28. Carreon LY, Glassman SD, Anekstein Y, Puno RM. Platelet gel (AGF) fails to increase fusion rates in instrumented posterolateral fusions. Spine. 2005;30(9):E243–6. discussion E247.

  29. Jenis LG, Banco RJ, Kwon B. A prospective study of Autologous Growth Factors (AGF) in lumbar interbody fusion. Spine J. 2006;6(1):14–20.

  30. Castro FP Jr. Role of activated growth factors in lumbar spinal fusions. J Spinal Disord Tech. 2004;17(5):380–4.

  31. Weiner BK, Walker M. Efficacy of autologous growth factors in autologous intertransverse fusions. Spine. 2003;28:1968–70.

  32. Lowery GL, Kulkarni S, Pennisi AE. Use of autologous growth factors in lumbar spine fusion. Bone. 1999;25:47S–50S.

  33. Chen W, Lo WC, Lee JJ, Su CH, Lin CT, Liu HY, et al. Tissue-engineered intervertebral disc and chondrogenesis using human nucleus pulposus regulated through TGF-beta1 in platelet-rich plasma. J Cell Physiol. 2006;209(3):744–54.

  34. Hunziker EB, Driesang IM, Morris EA. Clinical orthopaedics and related research. Chondrogenesis in cartilage repair is induced by members of the transforming growth factor-beta superfamily. Clin Orthop Relat Res. 2001;391(Suppl):S171–81.

  35. Nakagawa K, Sasho T, Arai M, Kitahara S, Ogino S, Wada Y, et al. Effects of autologous platelet-rich plasma on the metabo­lism of human articular chondrocytes. Chiba and Ichihara, Japan. Electronic poster presentation P181. International Cartilage Repair Society Meeting, Warsaw Poland, October 2007.

  36. Kon E, Filardo G, Presti ML, Delcogliano M, Iacono F, Mon-taperto C, et al. Utilization of platelet-derived growth factors for the treatment of cartilage degenerative pathology. Bologna, Italy. Electronic poster presentation 29.3. International Cartilage Repair Society Meeting, Warsaw Poland, October 2007.

  37. Anitua E, Sa´nchez M, Nurden AT, Zalduendo MM, De La Fuente M, Azofra J, et al. Platelet-released growth factors enhance the secretion of hyaluronic acid and induce hepatocyte growth factor production by synovial fibroblasts from arthritic patients. Rheu­matology. 2007;46(12):1769–72.

  38. Wu W, Chen F, Liu Y, Ma Q, Mao T. Autologous injectable tissue-engineered cartilage by using platelet-rich plasma: exper­imental study in a rabbit model. J Oral Maxillofac Surg. 2007;65(10):1951–7.


Возврат к списку

© Copyright 2014